Presentación 6to Congreso Ecuatoriano de Acuicultura, Octubre 2001

<sub>Tecnología para el Cultivo de Scallops (Argopecten circularis Sowerby 1835) en Ecuador

Enrique Blacio (1) y Rafael Alvarez (2)</sub>

Resumen

Los moluscos representan una buena alternativa en cuanto a aportaciones importantes para la diversificación de la acuicultura del Ecuador.  En el país existen varias especies de moluscos que son consumidos tradicionalmente.  En algunos casos, especies como la concha prieta (Anadara tuberculosa)  y el ostión de mangle (Ostrea columbiensis) han sufrido una importante disminución del recurso en el tiempo debido en gran parte a la explotación no controlada.  CENAIM ha realizado anteriormente investigaciones con la ostra del Pacífico (Crassostrea gigas) y actualmente con el scallop marino Argopecten circularis, conocido como concha blanca o concha abanico, también denominado bay scallop o calico scallop en el mercado internacional.  Este organismo puede ser considerado como un candidato para la acuicultura ecuatoriana, en especial para el mercado de exportación.  En este sentido, el scallop tiene la ventaja de no necesitar controles tan estrictos para su ingreso a mercados tales como el americano, si lo comparamos a otros moluscos.  Puede consumirse entero, pero el mercado de exportación prefiere callo y gónadas, pudiendo presentar un producto con valor agregado.  En este trabajo se detalla los procedimientos técnicos que se utilizan para la producción de scallops en el Laboratorio de Cultivo de Moluscos del CENAIM.

Introducción

En los actuales momentos, la acuicultura ecuatoriana relacionada con el cultivo del camarón blanco (Penaeus vannamei), se encuentra enfrentando una serie de problemas, entre los cuales destacan los relacionados a enfermedades tales como el Síndrome de la Mancha Blanca (WSSV), el cual ha disminuido en gran medida la producción camaronera en los últimos dos o tres años.  En vista de estos inconvenientes, y sumado al hecho de que la mayor parte de la acuicultura del país se basa en el cultivo de esta sola especie, es necesario buscar otras alternativas viables de producción acuícola.

CENAIM ha estado trabajando con moluscos marinos desde el año de 1991.  Las actividades del Laboratorio de Cultivo de Moluscos se iniciaron con una especie foránea de gran distribución a nivel mundial, la ostra japonesa u ostra del Pacífico, Crassostrea gigas.  El trabajo realizado en el laboratorio permitió cerrar el ciclo de esta especie en cautiverio por vez primera en el país y poder ensamblar un paquete tecnológico que permitiese producirla comercialmente, tecnología que fue transferida al sector productor.  Seguidamente se propuso como objetivo trabajar con una especie nativa de molusco que pudiera incorporarse a las actividades productivas de acuicultura, escogiendo para ello el scallop nativo, Argopecten circularis (concha blanca o concha abanico).

Existen alrededor de 400 especies de bivalvos pectínidos distribuídas alrededor del mundo.  El scallop Argopecten circularis (Sowerby 1835) es la principal especie comercial de pectínido presente a lo largo de la costa ecuatoriana. En nuestro país no existe una pesquería establecida y los conocimientos biológicos sobre esta especie son escasos.  No hay publicaciones científicas nacionales que detallen aspectos taxonómicos, biológicos, ecológicos o de producción, por lo que la información que se puede obtener sobre esta especie proviene principalmente de Chile, Perú y México.

Las actividades que se llevaron a cabo con el scallop en el laboratorio tuvieron como objetivo, al igual que en el caso de la ostra japonesa, lograr cerrar el ciclo en cautiverio y poder armar un paquete tecnológico para producción.  CENAIM pudo investigar y cerrar el ciclo de este molusco en el laboratorio en el marco de un proyecto de investigación apoyado por la Fundación para la Ciencia y la Tecnología del Ecuador (FUNDACYT) y el Banco Interamericano de Desarrollo (BID), denominado Proyecto PBID-198 o “Cultivo de Especies No Tradicionales (Moluscos)”.  CENAIM actualmente tiene la tecnología para llevar a cabo maduración gonadal, desove inducido, larvicultura, fijación y crecimiento de este scallop.  Se han adaptado y probado tecnologías para el engorde en sistemas de líneas submarinas (“long lines”) con varias artes de cultivo (pearl nets, prismas, linternas) y en corrales de fondo en piscinas camaroneras.

Para este trabajo se siguieron los lineamientos básicos desarrollados para el cultivo de Argopecten  purpuratus, el ostión o scallop nativo de aguas de Chile y Perú, y se adaptó dicha tecnología a las condiciones del medio.  Se determinaron las diferentes etapas de desarrollo gonadal, y se hizo inducción al desove, obteniendo un protocolo que permite obtener gametos viables sin depender de la reproducción natural.  Las primeras experiencias de cultivo larval se realizaron en tanques circulares cónicos de 500 litros con el propósito de investigar la biología larval de la especie.  El asentamiento larval y cultivo de semilla fueron posibles desde 1994, produciendo al inicio aproximadamente 100.000 semillas de scallops de 1 milímetro.  Experiencias posteriores permitieron definir las variables críticas del cultivo y establecer una rutina de producción de semilla que incluyó una etapa final de precultivo en mar abierto.

Actualmente, el laboratorio produce semilla y la mantiene en el proceso de cría y fijación  hasta que llega a 800 micras (µm) de longitud, tamaño en que es transferida a mar abierto para su crecimiento.  El uso de este protocolo de transferencia temprana al mar representa una gran disminución en los costos de producción de microalgas en el laboratorio, ya que en esta fase la alimentación a base de fitoplancton es intensa por el número elevado de individuos que se manejan.

En base a las investigaciones llevadas a cabo en el marco del proyecto, se ha podido definir las fases técnicas del cultivo y combinar actividades de laboratorio y campo para poder iniciar procesos de producción a escala comercial de este bivalvo.

Materiales y métodos

Descripción de la especie

El scallop Argopecten circularis (Figura 1) es un bivalvo pectínido que obtiene un tamaño comercial aproximado de 45 milímetros de longitud, lo que corresponde a un promedio de 30 gramos de tejidos blandos, de los cuales alrededor de 4 o 5 gramos corresponden al callo o músculo y entre 8 y 9 gramos al músculo con gónada adosada en tiempo de desove.  Los adultos de esta especie llegan a tener una longitud de 50 milímetros.

Son animales caracterizados por poseer dos valvas calcáreas que encierran y protegen al cuerpo de tejidos blandos (Hardy 1991).  Su concha es de forma orbicular, gruesa y convexa.  Es de color variable siendo la valva izquierda casi siempre más oscura que la derecha, con manchas rojo-púrpura a café; la valva derecha generalmente es de un solo color, amarillo, blanco, rosado o jaspeado con líneas en "V" invertida de color café oscuro (Ortega 1997).  Estos pectínidos (entre pocos bivalvos) tienen capacidad natatoria, lo cual realizan por medio de propulsión, tomando agua por su borde ventral y expulsándola con fuerza a los lados de su bisagra o charnela (Hardy 1991).

Figura 1.  Dos ejemplares de scallop Argopecten circularis .

Hábitat y distribución

Argopecten circularis es una especie marina que habita en aguas moderadamente profundas  (entre 20 a 40 metros) y puede acomodarse sobre una gran variedad de sustratos tales como sustratos arenoso-fangosos, fangosos, arena gruesa o sobre rocas asociadas a algas, corales o gorgonias.  Las especies comercialmente importantes de pectínidos usualmente se sitúan sobre sustratos más duros, a base de gravas o arenas desde finas a gruesas (Brand 1991).

Esta especie puede ser encontrada desde desde Paita, Perú hasta Bahía Monterey, California (Brand 1991).  Localmente se la ha encontrado en Esmeraldas y Jaramijó en la Provincia de Esmeraldas, en Manta, Puerto Cayo, Machalilla y Salango en la Provincia de Manabí, y en la Punta de Santa Elena y Playas en la Provincia del Guayas (Mora 1990).  En estos sitios se localizan sobre fondos preferentemente arenosos, pues aunque el género Argopecten tiene preferencia por los sustratos con presencia de vegetales marinos (Wilkens 1991), éstos no son comunes en las zonas costeras del Ecuador.  Tampoco se encuentra frecuentemente a A. circularis  en zonas donde la concentración de lodos o cienos es muy alta en el fondo, nuevamente marcando preferencias por fondos arenosos.

Un aspecto que debe considerarse en cuanto a distribución de este organismo es la habilidad de los pectínidos para poder movilizarse.  Los scallops tienen una respuesta de movimientos saltatorios a la necesidad refleja de colocarse en posición correcta y como escape ante ataques de depredadores, pero por lo general estas reacciones de escape no llevan a los animales a distancias mayores a 1 metro de altura y 5 metros de desplazamiento en cada esfuerzo (Brand 1991).  En algunas especies se ha llegado a aseverar que pueden hacer migraciones extensas, tal es el caso de individuos pertenecientes a los géneros Chlamys, Argopecten, Placopecten, Patinopecten y especialmente Amusium.  De este último género, existen registros descritos por Morton en 1980 (citado por Brand 1991) de movimientos de Amusium pleuronectes durante el invierno y de A. japonicum en verano en mares adyacentes a Hong Kong, aparentemente con fines reproductivos.  También hay registro de desplazamientos de A. balloti en Australia, pero de 677 animales marcados en un experimento, sólo 14 se desplazaron más de 10 kilómetros de su sitio original en un periodo de alrededor de 4 meses, lo cual no se puede considerar como una verdadera migración (Williams y Dredge 1981).

Obtención de reproductores

Reproductores de A. circularis son normalmente capturados como fauna acompañante en la  pesca de camarón con embarcaciones de arrastre (barcos “chinchorreros”).  Luego son comercializados al menudeo por pescadores artesanales.  El laboratorio de moluscos normalmente obtiene reproductores adquiriéndolos a los pescadores, especialmente entre julio y diciembre.  El transporte de estos animales se hace normalmente en gavetas plásticas sin agua, si el tiempo de viaje es de pocos minutos.

Los animales que presentan mayor tamaño y mejor aspecto son escogidos y adquiridos, a precios que fluctúan alrededor de los ocho a diez dólares americanos por gaveta, en las cuales pueden obtenerse alrededor de doscientos animales en buenas o aceptables condiciones.  En oportunidades es posible localizar ejemplares de manera aislada en los mercados pesqueros de las localidades costeras.

Acondicionamiento y maduración de los reproductores

Los animales que se reciben en el laboratorio son colocados en tanques de bajo volumen (70 a 300 litros).  Se hace una revisión del estado de los animales, desechando los muertos o moribundos.  Se procede a hacer una selección y limpieza de los ejemplares escogidos (remoción de incrustantes).  Los animales adquiridos (ejemplares de alrededor de 35 gramos de peso y unos 45 a 50 mm de longitud) se mantienen por 24 horas en el mismo tanque con flujo abierto de agua filtrada a 25µm, con un recambio que va del 200 al 1000 % al día dependiendo del volumen del tanque.

Luego de permanecer en el taque de flujo continuo, los animales son transferidos a un tanque de maduración de dos toneladas de capacidad equipado con una bomba de calor (Earth Corporation, Tokyo, Japón) para manejar la temperatura del agua (figura 2).  El agua se mantiene en un ciclo cerrado con el fin de poder mantener temperaturas bajas en el sistema.

Dependiendo de la temperatura ambiente en la cual los animales son recibidos, se baja gradualmente la misma hasta llegar a 20°C.  En este punto los animales (hasta 100 ejemplares por tanque)  son mantenidos por alrededor de uno a dos meses, dependiendo del estado de desarrollo gonadal inicial.

El equipo de enfriamiento del agua debe estar muy bien calibrado y tener la suficiente exactitud para mantener el agua de manera constante en los 20°C (con una fluctuación máxima de 2 grados), ya que un cambio brusco en la temperatura puede iniciar una cadena de desoves antes de tiempo.

La alimentación de los scallops para fines de maduración se hace en base a microalgas de las especies I. galvana var. T-Iso combinada con Chaetoceros gracilis o Chaetoceros calcitrans . Se prefiere que I. galvana sea al menos  un 50 % de la dieta.  Se entrega una dosis de algas calculada en 3x10⁹ células por animal por día, la mayoría en horas de mañana y el remanente volumen por un sistema de flujo continuo por gravedad en las siguientes 20 horas.

Figura 2.  Sistema de tanque de maduración de dos toneladas de capacidad con equipo de control de temperatura.

El proceso de maduración se constata mediante observaciones periódicas del estadío gonadal de los animales.  Para esto se toman muestras una vez por semana (alrededor del 30 ejemplares de la población en proceso de maduración) para verificar la coloración y abultamiento de ovarios y testes. La observación y calificación de los reproductores se la debe realizar en forma rápida para evitar maltratar a los animales.  Los scallops son mantenidos por breves momentos fuera del agua, con lo cual se produce un movimiento reflejo de apertura de las valvas, lo que permite la verificación visual del estado gonadal.  Seguidamente se los devuelve al tanque de maduración.

El muestreo debe hacerse con mayor cuidado cuando los reproductores se encuentran en los dos últimos estadios debido a que en estas etapas cualquier estímulo fuerte los puede inducir al desove.  Para determinar el estado de maduración se sigue una escala visual referencial (Ortega 1997) desarrollada en el laboratorio (tabla 1).

El tiempo requerido para alcanzar una etapa avanzada de madurez dependerá del estado inicial de las gónadas.  Bajo las condiciones de temperatura y alimentación indicadas anteriormente, la maduración se la obtiene después de 30 días si se inicia con animales en  estadios entre 0 y 1.  Por otro lado, a pesar que existe una buena sincronización en la maduración de los reproductores, no todos alcanzan los estadios máximos al mismo tiempo.  Las experiencias obtenidas en el laboratorio nos indican que entre el 70 y 80% de la población de reproductores se sincroniza para el desove.

Tabla 1.  Determinación de estadíos de desarrollo gonadal de scallops (Ortega 1997).

Inducción a desove

Ejemplares que alcancen el estadío IV de desarrollo gonadal son removidos del tanque de maduración y colocados en tanques de bajo volumen (acuarios de 50 litros o tanques de 100 litros) con aireacion leve y calentadores de varilla de titanio.  Se produce una elevación de la temperatura en el tanque de desove a razón de 2°C cada 15 a 20 minutos, hasta alcanzar los 26 o 27°C.  En el laboratorio, este incremento súbito es suficiente para estimular el desove entre 3 a 7 horas mas tarde.  Los desoves en su mayoría son parciales.  La fecundidad puede variar entre 500.000 a 4.000.000 de óvulos por animal.  Siendo esta especie hermafrodita, el desove lo inicia la parte masculina y es importante la observación continua para evitar la autofecundación. Espermios y óvulos son obtenidos por separado.  Posteriormente son unidos en otro tanque similar (máximo en un tiempo de una hora), en el que se debe mantener una relación espermios:óvulos de 8-10:1 como máximo (Alarcón 1993), para evitar el peligro de producir una poliespermia, que determina bajas tasas de fertilización y supervivencia.  Si se obtiene fecundación superior al 90%, se siembran los óvulos fecundados (45 a 50 µm) en los tanques de larvicultura, distribuyéndolos de acuerdo a la capacidad de los mismos.  La densidad de siembra inicial es de 2.000 por litro.

Larvicultura

El proceso de larvicultura se lleva a cabo en tanques circulares de una tonelada de capacidad, preferentemente de color oscuro o provistos de cubiertas oscuras (figura 3).  La alimentación se inicia después de 24 horas de sembrado. Las especies de microalgas utilizadas son Isochrisis galvana (clon T-ISO) y Chaetoceros gracilis y Monochrisis.    Las larvas desarrollan su concha luego de 16 horas. El tanque es llenado con agua filtrada a 1 o 3 µm, esterilizada con luz ultravioleta y temperada a 26 a 27°C. Para mantener la calidad del agua se agrega de 3 a 4 ppm de EDTA Na₂ durante toda la etapa larval.  El uso de antibióticos como preventivo es posible pero se recomienda evitarlo.  Se requiere aireación moderada.

Figura 3.  Tanques de plástico de una tonelada de capacidad para larvicultura de scallops.

A partir de la presencia de larva D bien formada (70 µm) que se inicia con la rutina de cultivo larval y empieza con el tamizado de las larvas.  Esta actividad permite eliminar óvulos no fecundados, larvas enanas, deformes, muertas, cambiar el agua del tanque y llevar un seguimiento de las larvas.  Esta actividad se realiza por lo general cada día.  Los  tamices son fabricados con lavacaras plásticas con fondo de malla Nytex_Ò de diferentes aperturas (figura 4), y se los cambia de acuerdo con la talla de la larva, siguiendo el  esquema propuesto en la tabla 2.

Figura 4.  Diferentes tamices utilizados para scallops.

Tabla 2. Uso de tamices en larvicultura de scallops.

* Asentamiento o fijación

La colecta para el tamizaje de las larvas se la hace drenando el tanque por sifón (en tanques de poca capacidad, hasta 2 toneladas) o por válvulas en la parte inferior, a razón de unos 60 l/min. Es importante que la larvas no caigan directamente al tamiz, para lo cual se prepara un colchón de agua (figura 5) para evitar su maltrato (Ortega y Lombeida 2001).   El flujo de agua hacia el tamiz es detenido en cada tonelada de agua, las larvas son enjuagadas, colocadas en un recipiente con agua y completado a un volumen conocido (generalmente 20 litros).

Figura 5.  Tamiz formando un colchón de agua para recepción de semilla de scallops.

Luego de cosechar todo el tanque de esta manera, se puede revisar la población larvaria para desechar larvas deformes o muertas, y para estimación utilizando varias muestras de un mililitro de este concentrado en una cámara de contaje tipo Sedgewick-Rafter.  Este procedimiento permite tener cultivos mas homogéneos lo cual es importante en la etapa de fijación o asentamiento.

Fijación de semilla

Hacia el día 11 o 12, las larvas son cosechadas normalmente.  Las que han alcanzado una talla igual o mayor a 180 µm y tienen la presencia de la mancha ocular y el pie son transferidas a los tanques de fijación.  Estos tanques  se proveen de bolsas (tipo “onion bag”) para fijación de las larvas, hechos de plástico suave de color verde agua (figura 6).  Se colocan ya preparados (lavados, desinfectados y curados con algas), a razón de un colector para cada 40,000 o 50,000 larvas.  La densidad larval para asentamiento es de 1-2 larvas/ml. El período de metamorfosis es entre 3 a 5 días.  Durante el tiempo de metamorfosis se cubren los tanques con plástico oscuro para mantenerlos en completa oscuridad.  La luz en exceso puede conducir a una pobre fijación.

Precría

La precría se realiza en los mismos tanques de fijación. La rutina de esta etapa consiste en el  mantenimiento de las larvas, alimentación, recambios, limpieza.  La alimentación se proporciona como una mezcla de I. galvana  var. T-Iso y Ch. gracilis en una relación 1:1 a razón de 40.000 al inicio de la precría y 80.000 cel/ml al final. La tasa inicial de recambio es del 50% diario (agua filtrada a 3 µm, temperatura ambiente). Una vez que las postlarvas son visibles a simple vista se hacen recambios del 100% cada 4 o 5 días.

Cuando las larvas lleguen a medir 500 µm de longitud se sacan los colectores del tanque y se los coloca temporalmente en una bandeja con agua.  Larvas adheridas a las paredes del tanque deben ser removidas utilizando una brocha suave, se las enjuaga en un tamiz de 250 µm y se las vuelve a fijar sobre las mallas.  En el laboratorio se mantendrán hasta que alcancen 800 a 1.000 µm.  En esta talla las semillas están listas para ser transportadas a cultivos en mar abierto.

Figura 6.  Bolsas de plástico suave (tipo onion bag) para fijación de semilla de scallops.

Engorde en mar abierto

La semilla que ha alcanzado la talla adecuada es llevada a sistemas de cultivo submarino que consisten en líneas sumergidas (long lines) como se muestra en el diagrama de la figura 7. 

Figura 7.  Diagrama del sistema de cultivo submarino de scallops (long line).

El long line tiene una línea principal de la cual se suspenden los sistemas de cultivo, ya sean éstos pearl nets (figura 8), prismas (figuras 9 y 10) o linternas (figura 11).  El long line es mantenido a flote mediante boyas y asegurado al fondo mediante pesos de concreto.

Figura 8.  Arte de cultivo denominado pearl net con scallops.

Figura 9.  Arte de cultivo para scallops denominado prisma.  El prisma de la derecha se encuentra forrado con malla larvera (color rojo), para poder hacer cultivo de semilla de tamaño pequeño (800 a 1000 micras).

Figura 10.  Arte de cultivo denominado prisma, en operación (suspendido en long lines bajo el agua).

Figura 11.  Arte de cultivo denominado linterna, en operación.

Para el inicio del engorde, cuando se siembra semilla de tamaño pequeño (800 a 1000 µm), se debe forrar los sistemas con alguna tela protectora para evitar el escape de la semilla al exterior.  La densidad de siembra de la semilla de 800 a 1000 µm es de aproximadamente unas 11,000 por metro cuadrado, lo que corresponde a unas 1000 semillas en cada pearlnet de 30 cm. de lado o unas 6,000 en cada prisma de 30 cm. x 100 cm. de base.

Las actividades dentro del cultivo en mar son generalmente semanales, consistiendo en limpieza (remoción de incrustantes y algas) e inspección de los sistemas, y cada dos semanas muestreos de tamaño y supervivencia de los animales.  El cultivo se lleva a cabo hasta que los scallops lleguen a su tamaño comercial (cerca de 45 mm de longitud), lo cual puede demorarse alrededor de seis meses en mar abierto.  Durante este tiempo se deben hacer varias redistribuciones (raleos) de los animales en sistemas adicionales para evitar la sobrepoblación de los mismos y por ende el retraso en el crecimiento.  Al ser las condiciones del mar muy estables en cuanto a temperatura y salinidad todo el año, se puede cultivar de manera continua en estos sistemas.

Engorde en granjas camaroneras

La semilla de tamaño pequeño puede ser engordada en mar abierto y ser posteriormente llevada a una granja camaronera para cultivo en piscinas (sistemas de cultivo suspendido o cultivo de fondo) o en canales reservorios (sistemas de cultivo suspendido).  Es importante notar que la fase de engorde en granjas camaroneras puede ser llevada a cabo únicamente en los meses de verano, ya que en invierno las altas temperaturas y especialmente la presencia de lluvias y la fuerte variación en la salinidad del agua en las piscinas pueden ocasionar la muerte de los organismos.  Por ende, es recomendable sembrar, con animales del mayor tamaño posible, a fines del invierno (mayo o junio) y cosechar en diciembre o enero, antes del inicio del siguiente invierno.  Esto asegura lograr un tamaño adecuado para su comercialización.

Para el cultivo de fondo, se siembran animales con tallas mínimas entre 10 y 20 mm de longitud, cuidando que el fondo de la piscina a escoger tenga un alto contenido de arena (sobre el 40 %), a densidades alrededor de 30,000 animales por hectárea (figura 12).

Figura 12.  Semilla de scallops de alrededor de 20 mm sembrada en el fondo de una piscina camaronera con alto contenido de arena.

Debe tenerse cuidado de instalar un cerco de malla (plástico extruído de 1 cm de luz) en los alrededores de las orilla de la piscina (figura 13), ya que en este sistema de cultivo los scallops tienden a varar en las orillas, ocasionándose mortalidades.  Aquí las actividades se remiten al muestreo quincenal para determinar tasa de crecimiento y supervivencia.  Los scallops aceptan el manejo normal de una piscina camaronera, pudiéndose incluír el camarón en el ciclo a manera de policultivo.  La cosecha se hace animal por animal, para lo cual se necesita mano de obra adicional.

En las granjas camaroneras también se hace cultivo en sistemas suspendidos en los canales reservorios, para lo cual pueden utilizarse prismas o pearl nets (figura 14).  En las piscinas camaroneras con alto contenido de lodos o arcillas, puede optarse por fabricar un sistema de camas o rejillas sobre las cuales se colocan bolsas de malla extruída donde se cultivan los organismos (figura 15).

Figura 13.  Detalle de cerco en una piscina para engorde de scallops en fondo.

Figura 14.  Colocación de pearl nets para cultivo en canal reservorio.

Esto se debe hacer debido a que un contenido muy alto de arcillas o lodos causan mortalidades en los scallops, en gran medida debido al taponamiento de su sistema filtrador, privando de alimento al organismo.  La cantidad de animales a sembrar estará dada por el número de rejillas que se instalen en las piscinas.

Figura 15.  Estructuras de camas o rejillas sobre las cuales son colocados bolsos de mallas para el cultivo de scallops.

Discusión

Los moluscos presentan opciones variadas para acuicultura en el mundo.  El cultivo de scallops es una buena posibilidad para la acuicultura ecuatoriana.  Las investigaciones y pruebas que han sido realizadas por el Laboratorio de Cultivo de Moluscos del CENAIM, tanto en lo concerniente al manejo de técnicas de maduración y  larvicultura en el laboratorio, y el engorde en mar abierto y  en camaroneras han comprobado la factibilidad técnica de llevar a cabo un ciclo completo con esta especie.  En los actuales momentos la producción de semilla, que normalmente es el principal contratiempo en acuicultura, y que abarca los procesos de maduración, inducción a desove y larvicultura, se realiza de manera regular en nuestro laboratorio.  Teniendo ya un protocolo establecido, se mantienen investigaciones encaminadas a optimizar varios puntos de los procesos nombrados.  El proceso de fijación de la semilla, que dependiendo de la temperatura del agua, puede iniciarse entre los días 11 o 20 de vida de la larva, es una parte delicada el proceso. Se ha experimentado con varios materiales para determinar los mejores en cuanto a conseguir un mayor porcentaje de fijación, que normalmente en el caso de moluscos bivalvos es entre el 5 y 10 %.  Otro punto de constante preocupación es la calidad del agua para el cultivo, así como la calidad de la alimentación, la cual es básicamente microalgas.

Bajo este punto de vista, el cultivo de scallops puede ser realizado en dos escenarios:  como cultivos en mar abierto y cultivos en granjas camaroneras.  A diferencia de la piscinas de las granjas, que se ven afectadas en gran medida por parámetros críticos como son temperatura y salinidad en las dos diferentes estaciones climáticas del año en nuestro país, el mar representa un medio mucho más estable, permitiendo mantener cultivos en líneas sumergidas durante todos los meses del año.  En las granjas camaroneras el cultivo de este molusco se vería restringido a los meses de clima frío (junio a noviembre), que en la costa ecuatoriana se manifiestan con una disminución marcada de las lluvias y esto contribuye a la estabilidad de la salinidad en las piscinas.  La estrategia a aplicar en este caso sería la de obtener desoves inducidos  en marzo o abril y realizar larvicultura y un engorde inicial en mar abierto, para sembrar las piscinas con animales de tamaños adecuados a inicios de la temporada de frío y llevar a cabo seis meses de engorde.

En este punto, el scallop es una especie que puede muy bien aplicarse a un sistema de cultivo secuencial en piscinas camaroneras.  Tomando en cuenta que el camarón crece más rápidamente en los meses de invierno, la granja puede hacer su corrida normal de enero a mayo.  Seguidamente, en los meses de verano, cuando las temperaturas más bajas retrasan el crecimiento de los camarones y aumenta la posibilidad del ataque de enfermedades como la mancha blanca, se puede usar la infraestructura para la cría de scallops, ya sea en cultivos en fondo o en sistemas suspendidos.  Incluso si hay fincas que siguen cultivando camarón en verano, hay la posibilidad de hacer policultivo, colocando los sistemas de camas o rejillas en las piscinas y sembrando los scallops en bolsas de malla extruída sobre ellas.  De esta manera, en caso de que haya cosecha de camarón y los scallops todavía no estén de tamaño apropiado, sencillamente se los puede mover hacia otra piscina que esté llena.

El aspecto de laboratorios para la producción de semilla es otro punto importante para la industria.  No se requiere de mucha inversión para que un laboratorio que produce larvas de camarón pueda iniciarse en la producción de semilla de scallops, puesto que algunas actividades son comunes y otras se verían simplificadas.  Por ejemplo, se puede prescindir del departamento de zooplancton, mientras que se debe ampliar la capacidad para producir algas.  Muchos tipos de tanques que se usan hoy para larvicultura de camarón son aplicables para la fijación y larvicultura de moluscos.

Así como en el país se ha manifestado interés por algunas especies diferentes al camarón, especialmente en lo que es peces marinos (Benetti et al. 1995), los moluscos son otra alternativa que puede apoyar a la diversificación de la industria.  Se puede tomar información de México en cuanto a su historia de cultivar el Argopecten circularis, que se inició a finales de los años 70 (Chávez y Cáceres 1992) y de otros países tales como Chile,   donde se ha constituído en una industria acuícola muy fuerte en sus regiones del norte, contribuyendo a la diversificación de la misma manera en que lo hacen los cultivos de salmón en la parte sur de ese país.  En el Ecuador, la infraestructura camaronera existente y las buenas condiciones climáticas de la zona costera, junto a los conocimientos obtenidos en las investigaciones realizadas, nos permiten afirmar que el scallop se constituye en una especie técnicamente viable para cultivo.

Agradecimiento

Los autores desean expresar su agradecimiento a la directiva de la Fundación CENAIM-ESPOL por el apoyo constante al programa de diversificación de la acuicultura.  Igualmente a la División de Operaciones del CENAIM por su contribución a la parte logística del proyecto y al personal del Laboratorio de Cultivo de Moluscos del CENAIM que colabora en las actividades diarias.

Bibliografía consultada

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